注射用地西他滨说明书

注射用地西他滨说明书（精选2篇）

注射用地西他滨说明书 篇1

【汉语拼音】ZhuSheYongDiXiTaBing

【化学名】4-氨基-1-(2-脱氧-β-D-赤式-顺-呋喃核糖)-1，3，5-三嗪-2(氢)-1

【分子式】C8H12N4O4

【分子量】228.21

【主要成分】地西他滨

【性状】外观为白色至类白色细微粉末。

【适应症】治疗急性髓性白血病、骨髓异常综合征。

【用法用量】第一治疗周期的推荐剂量为静脉注射地西他滨15mg/m2 3小时，间隔8小时重复一次，连续三天。患者须提前服用止吐剂。此疗程每六周重复一次。患者少应经过四个疗程，直到病情得到控制与好转。第一和第二治疗周期中，骨髓抑制和中性粒细胞减少症较常见。较严重的中性粒细胞减少症发生率为87%，血小板减少症为85%，热性的中性粒细胞减少症为23%，白细胞减少为22%。骨髓抑制是减少剂量或中断治疗的主要原因。在整个治疗的过程中须密切关注血小板数量，随时调整剂量或暂停治疗。

【药理毒理】

地西他滨一种天然2′-脱氧胞苷酸的腺苷类似物，通过抑制DNA甲基转移酶，减少DNA的甲基化，从而抑制肿瘤细胞增殖以及防止耐药的发生。

因为去甲基化药物可活化肿瘤细胞抑癌基因，增强分化基因等调控基因的表达，所以可达到治疗MDS的目的。地西他滨被磷酸化后，发挥其抗肿瘤作用。它直接作用于DNA，抑制DNA甲基转移酶，从而使DNA低甲基化，细胞分化死亡。地西他滨在体外抑制DNA甲基化，却不影响DNA的合成。它可导致肿瘤细胞去甲基化，可以恢复基因的正常功能，这对于控制细胞的分化和增殖是非常重要的。但非增殖性细胞对地西他滨不敏感。

杨力等以MDS-RAEB细胞株SKM-1为研究对象，了解地西他滨促进SKM-1株分化和诱导凋亡作用以及可能机制。

研究表明，3.2mmol/L地西他滨可使异常甲基化的pl5INK4B恢复正常的去甲基化，表达增强，从而抑制SKM-l细胞增殖，促进分化，可能是其治疗MDS的主要机制。

Bahar等近报道，应用地西他滨可重新激活肿瘤细胞中DNA损伤诱导生长抑制基因(GADD45beta)的表达。Alleman等报道，地西他滨可使移植肾肿瘤细胞老鼠身上的肿瘤明显变小。Miotto等则报道，地西他滨可使CDH4肿瘤抑制基因在肠癌和胃癌细胞中重新表达。KAWAKAMI等研究则表明，地西他滨可使膀胱癌DNA修复基因(hMSH3)恢复表达，从而影响膀胱癌的生长。

Romaih.KI等在免疫缺陷大鼠的肾下被膜进行U2OS异种嫁接，进而研究地西他滨在体内对肿瘤生长和分化的影响。通过免疫组织化学方法，采用5-甲基胞苷抗体能检测到异种嫁接大鼠细胞核的甲基化水平降低了。地西他滨能显著地减小肿瘤异种嫁接的尺寸(p <0.05)。

【药代动力学】SuperGen公司对170例确诊的成年MDS患者进行了标记开放性多中心随机对照临床研究。试验组89例患者随机接受地西他滨治疗加支持性医护治疗，对照组81例患者随机仅接受支持医疗。试验组患者每8小时接受达珂治疗，剂量为15mg/m2静脉滴注3小时，连续用药3天。每6周使用地西他滨治疗1次。支持疗法包括输血或血液制品、预防性使用抗菌药物及生长因子。治疗288天后，达珂治疗组平均总有效率为17%，支持疗法组为0(p<0.001)。达珂组完全应答率为9%，部分应答率为8%。病理学确诊的MDS患者，以地西他滨至少治疗2个疗程，总有效率为21%。此外，达珂组13%的患者血液学得到改善，支持疗法组改善率仅为7%。

Wijermans等用地西他滨治疗具有高危MDS的老年病人，每6周1个疗程，每疗程持续3天，剂量为15 mg/m2，每疗程总剂量在120～15mg/m2之间。结果在121例中，49%对治疗有良好反应，其中20%完全好转，10%部分好转，19%血液学指标有改善。

Issa等采用地西他滨15mg/m2/天，静脉滴注>1h，每周5天，连续两周治疗50例(其中，AMI/MDS 44例，CML 5例，ALL 1例)，有效率为65%。而Kantarjian等认为地西他滨好剂量为20 mg/m2/天，静脉滴注>1h连续5天，且定期重复治疗，疗效更好。由于MDS的表现异质性，对IpSS系统中度-2和高危病人至少应接受4个疗程，部分可达6个疗程或更多，为了大限度地增加低甲基化药物的疗效，应尽可能长期治疗。

目前，暂时无注射地西他滨15mg/m2的药物代谢动力学有效数据。实体瘤患者注射地西他滨20～30mg/m2/天，治疗72小时后，其药代动力学数据呈二相性分布特征。总体清除率为(124±19)L/m2/时,终相消除半衰期为(0.51±0.31)小时。地西他滨的血浆蛋白结合率可忽略不计(<1%)。人体中的地西他滨准确代谢和消除途径机理尚未研究明确。在肝、粒细胞、肠的上皮组织中，地西他滨通过胞二磷胆碱的脱氨作用而消除，但这仅仅是一种可能的途径。

【不良反应】

常见副反应：中性白细胞减少(症)、血小板减少(症)、贫血、疲劳、发热、咳嗽、恶心、便秘、腹泻、高血糖、热性的中性白细胞减少(症)。

地西他滨慎用于下列情况的患者：肾病、肝机能障碍、血清肌酸肝>20 mg/dl、转氨酶高于正常人两倍、血清胆红素>1.5mg/dl。

【注意事项】

【禁忌】对达珂任何成分过敏者禁用。

【孕妇及哺乳期用药】禁用。

【批准文号】注册证号 H0548

【药品本位码】86979326000011

【规格】50mg*1瓶/盒

【贮藏】密封，阴凉干燥保存(温度不超过25℃)

【有效期】两年。

【生产企业】荷兰pharmachemie B.V.

注射用地西他滨说明书 篇2

关键词：吉西他滨,顺铂,药代动力学,动脉注射

肺癌在我国居恶性肿瘤死亡的第1位, 其发病率仍逐年上升[1]。肺癌分为非小细胞肺癌 (non-small cell lung cancer, NSCLC) 和小细胞肺癌 (small cell lung cancer, SCLC) 。非小细胞肺癌占肺癌总数的85%, 其中肺腺癌占30%~40%[2]。大多数肺癌患者临床诊断时往往已属晚期, 丧失了手术治疗时机。因此, 在肺癌的治疗方案选择中, 化疗药物仍然发挥着举足轻重的作用[3]。吉西他滨联合顺铂治疗肺癌的确切疗效在一些中外研究中已得到验证[4,5], 但是两种药物不同给药途径治疗肺癌的疗效比较研究却鲜有报道。本研究通过动物实验研究吉西他滨及顺铂动脉化疗与静脉化疗的药代动力学表现, 比较两种给药途径的药代动力学特点, 以了解动脉化疗是否有其优势。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 细胞株

人肺癌细胞珠 (A549) 购自上海市肿瘤研究所。

1.1.2 实验动物

裸大鼠40只, 8~10周龄, 体重 (180±15) g, SPF级, 雌雄各半, 实验动物购自上海市公共卫生临床中心实验动物部。饲养条件:各组鼠均同等自由饮水、摄食, 温度22~25℃, 相对湿度40%~50%。

1.1.3 药物

吉西他滨 (商品名:泽菲, 江苏豪森药业股份有限公司, 批号:130611) 及顺铂 (德州德药制药有限公司;批号:WA2A1211085) 。

1.2 仪器

Millipore超纯水机 (美国Millipore公司) 、Sigma3K15高速低温离心机 (德国Sigma公司) 、2695型高效液相色谱仪、2487型紫外检测器、Millennium 3.2色谱处理软件 (美国waters公司) 、BP211D电子分析天平 (德国Sartorius公司) 、XW-80 A旋涡混合器 (上海医科大学仪器厂) 、惠普1100 HPLC系统。不锈钢手提式压力蒸汽灭菌器 (合肥华泰医疗设备有限公司, YX-280A型) 、质谱仪 (美国PE公司, DRCⅡ型) 、离心机 (北京医用离心机厂, 型号LD4-2) 、洁净工作台 (苏州安泰空气技术有限公司, 型号SW-CJ-IFD) 、光学显微镜 (Olympus Optical Co.Ltd., 型号CHS No.100278) 。

1.3 方法

1.3.1 细胞培养

将人肺癌A549细胞复苏, 含10%小牛血清的DMEM培养液培养, 取生长指数良好的人肺癌A549细胞, 用0.25%胰蛋白酶消化, 离心, 收集细胞用磷酸盐缓冲液 (PBS) 稀释, 浓度调整为5×106/m L, 每只小鼠以0.2 m L接种于右腋皮下, 待肿瘤长至体积约为1000 mm3时移植于裸大鼠耳后造模。

1.3.2 造模

选择生长良好、瘤结无破溃的荷瘤裸鼠, 处死后无菌条件下完整剥离瘤结, 剪开瘤结, 清除中心坏死组织, 在生理盐水下, 用剪刀切成2 mm×2 mm×2 mm瘤组织块, 每只裸大鼠右耳后皮下接种2 mm×2 mm×2 mm瘤组织块, 接种在30 min内完成。正常饲养8 d后动物接种肿瘤成功;待3周后肿瘤长至2650~2800 mm3, 保证各组肿瘤平均体积无明显差异。

1.3.3 给药及取材

给药剂量:吉西他滨150 mg/kg, 顺铂10 mg/kg。给药方法: (1) 动脉化疗4组, 荷瘤大鼠经10%水合氯醛 (3.5 g/kg) 腹腔注射麻醉后, 沿颈部正中切开皮肤, 暴露右颈动脉, 于右颈动脉采用改良Seldinger技术插管, 先造影证实肿瘤供血动脉, 再经导管灌注吉西他滨150 mg/kg或顺铂10 mg/kg, 缓慢推注, 缝合皮肤。 (2) 静脉化疗4组, 吉西他滨150 mg/kg或顺铂10 mg/kg由尾静脉注入。裸大鼠体内给药后获取标本:将40只裸大鼠随机分为8组, 每组5只。在吉西他滨及顺铂分别动脉及静脉给药后5、10、20、40, 80、120、360、720 min将裸大鼠获取血液标本, 在10、40、120、720 min将裸大鼠处死获取肿瘤组织标本。血液收集于肝素抗凝管, 离心后获取血浆。标本冷冻于-20℃冰箱保存。

1.3.4 药物浓度测定

1.3.4. 1 吉西他滨药物分析

用高效液相色谱法 (惠普1100 HPLC系统) 测定吉西他滨的血浆药物浓度。采用惠普Hypersil ODS分析柱 (125 mm×4 mm, 5μm) 。流动相为水, 流速为0.8 m L/min。紫外检测波长268 nm。测定方法的日间误差及日内误差均<10%。血浆样品的处理:血浆0.5 m L, 加入0.1 mg/m L吉西他滨 (内标) 50μL, 以乙酸乙酯进行萃取, 吹干氮气, 用水溶解残留物后进样测定。组织标本的处理:在标本组织中分别加入0.1 mg/m L吉西他滨、0.1 mg/m L顺铂各50μL和水2 m L, 剪碎, 匀浆30 min, 取1 m L均匀血浆液, 2000 r/min离心10 min, 上清液以乙酸乙酯萃取, 其余步骤与血浆样品处理相同。

1.3.4. 2 铂含量检测

吸取血浆200μL, 对组织样本进行称重, 经湿法消解后, 利用电感耦合等离子体质谱法 (inductively coupled plasma-mass spectrometry, ICP-MS) 进行铂含量测定, 分别以“铂含量/血浆含量 (μg/m L) ”、“铂含量/组织含量 (μg/m L) ”表示测定结果。通过以下公式将铂含量换算为药物含量, 结果表示为“药物含量/血浆含量 (μg/m L) ”、“药物含量/组织含量 (μg/m L) ”:顺铂含量=检测的铂含量×300.05/195.08。ICP MS检测大鼠血浆、肿瘤铂含量的加标回收率分别为99.70%和97.30%。

1.4 统计学方法

采用SPSS 13.0统计学软件进行数据分析, 计量资料数据用均数±标准差 (±s) 表示, 两组间比较采用t检验, 以P<0.05为差异有统计学意义。应用DAS 2.0软件进行药代动力学分析。

2 结果

2.1 两组注射化疗药物后血浆及组织中的浓度变化情况比较

动脉及静脉组注射两组药物后, 血浆及组织中的药物浓度出现规律性变化。如药物在血浆中的浓度变化, 药物在组织中的浓度变化也可用数学模型来描述。吉西他滨血浆及组织中药物浓度变化符合药代动力学两室模型, 用药0~40 min后, 静脉组血浆药物浓度明显高于动脉组, 并且随着时间延长, 两组间血浆药物浓度差异渐消失;药物注射后动脉组及静脉组的药物峰浓度分别为 (30.84±10.11) μg/m L及 (48.96±7.02) μg/m L, 两组比较差异有高度统计学意义 (P<0.01) 。肿瘤组织内药物浓度水平动脉组与静脉组相似, 峰浓度分别为 (20.18±9.43) μg/m L和 (18.19±10.30) μg/m L, 差异有统计学意义 (P<0.05) 。动静脉组的血浆及组织药物峰浓度均在注射药物结束时出现 (图1A~D) 。

2.2两组注射化疗药物后在组织和血浆中药代动力学参数比较

两组注射顺铂后, 静脉组血浆药物峰浓度明显高于动脉组, 其峰浓度分别为 (21.64±9.72) μg/m L和 (15.13±7.12) μg/m L, 两组比较差异有高度统计学意义 (P<0.01) 。动脉组用药后10 min左右还可在血浆中见双峰现象, 第2峰低于第1峰。两组用药后组织中药物峰浓度动脉组明显高于静脉组, 两组比较差异有高度统计学意义 (P<0.01) , 因顺铂存在组织吸收过程, 静脉组的组织内药物峰浓度出现于用药后约28 min。见图1A、C。

A:吉西他滨血浆药物浓度曲线;B:吉西他滨组织药物浓度曲线;C:顺铂血浆药物浓度曲线;D:顺铂组织药物浓度曲线

注:*P:两组血浆样本各参数比较P值;**P:两组组织样本各参数比较P值;α:分布速率常数;β:药物消除速率常数;Cmax (峰浓度) 单位:μg/m L;AUC单位:血浆为μg/ (min·m L) , 组织为μg/ (min·m L)

2.3 两组注射化疗药物后的药代动力学参数变化

两组注射化疗药物后的药代动力学参数有所差异, 从表1可以看出, 动静脉组药物注射后, 组织内药时曲线下面积 (AUC) 值动脉组均大于静脉组;血浆的AUC值动脉组均小于静脉组。两组注射药物后, 组织内的药物消除速率常数 (β) 值动脉组明显低于静脉组, 因药物在动脉组组织内滞留时间延长。

2.4 两组注射化疗药物后在组织和血浆中峰浓度比值的比较

动脉注射吉西他滨后, 药物在组织与血浆中的峰浓度比值为 (0.591±0.106) , AUC比值为 (4.61±2.07) ;静脉注射吉西他滨后, 药物在组织与血浆中的峰浓度比值为 (0.412±0.045) , AUC比值为 (2.31±0.961) , 动脉组显著高于静脉组 (P<0.05) 。动脉注射顺铂后, 药物在组织与血浆中的峰浓度比值为 (0.463±0.165) , AUC比值为 (3.58±0.625) , 静脉注射顺铂后, 药物在组织与血浆中的峰浓度比值为 (0.141±0.062) , AUC比值为 (2.04±1.66) , 动脉组显著高于静脉组 (P<0.05) 。

3 讨论

吉西他滨是目前NSCLC治疗最有效的第三代化疗药之一。其作用机制是在机体细胞内的核苷激酶作用下生成具有活性的二磷酸核苷 (d Fd CDP) 及三磷酸核苷 (d Fd CTP) , 具有抑制细胞DNA合成的联合作用, 从而发挥抗肿瘤作用, 主要影响细胞DNA合成期 (S期) , 阻止细胞从G1期进入S期。顺铂属细胞周期非特异性抗肿瘤药, 作用机制为可将细胞阻滞于S期, 因其与其他抗癌药物无交叉耐药性, 故常与其他药物联用共同治疗肿瘤[5,6,7,8]。1998年美国食品药品监督管理局 (FDA) 根据相关临床试验结果, 批准吉西他滨和顺铂联合化疗作为晚期NSCLC患者一线治疗方案。国内外多项体内外研究证实吉西他滨与顺铂联合用药可明显提高生存期, 缓解全身症状及改善生活质量, 治疗NSCLC效果明显优于以往的常规化疗方案[9,10,11,12]。

随着介入放射学的发展, 经支气管动脉化疗目前已成为治疗不可切除性中、晚期肺癌的重要手段[13,14,15]。但肺癌介入治疗的化疗用药方案一般为顺铂、丝裂酶素C、5-氟尿嘧啶、表阿霉素等第二代药物化疗方案[15,16]。吉西他滨动脉灌注给药已经广泛用于肝转移瘤、胰腺癌和胆管肿瘤的介入治疗[17,18,19,20,21,22], 但在肺癌的介入治疗中鲜有报道。通过对肺癌动物实验研究吉西他滨动脉用药与静脉用药的药物代谢动力学研究尚未见报道。在临床应用中, 虽然裸小鼠肺癌模型制作比较成熟, 但因其体积小无法行血管造影检查, 不便在血管介入诊疗领域进行深入研究。其他大型动物却成瘤困难。本实验采用A549肺癌细胞株建立裸大鼠耳后移植瘤, 建造肺癌模型, 成瘤率高, 便于动脉插管, 它的成功制作有利于肺癌荷瘤动物动脉介入实验的顺利开展。

研究发现动脉化疗与静脉化疗相比有独特优势[17,23,24,25]。首先, 动脉注射药物后, 靶组织药物峰浓度较高, 滞留时间也较长, 有利于其药效发挥, 并且动脉给药后血浆药物峰浓度及AUC值相对较低, 可减少化疗药物全身毒性。局部组织滞留化疗药物的能力是动脉给药的主要优势, 而药物的药理特性决定化疗药物药物在组织中的滞留时间。动脉给药, 可使药物首先从血浆分布至靶组织, 再从靶组织进入循环系统, 分布到其他组织中去;而对于静脉注射, 化疗药物首先进入循环系统, 再分布至靶组织。由于动脉及静脉注射药物经历不同代谢过程, 其药代动力学参数必然有所差异。本研究发现动脉或静脉注药后, 组织及血浆中药物浓度出现规律性变化, 可以用两室模型描述其变化过程。另外, 本研究也发现药物浓度在血浆分布相快速降低的同时, 组织药物浓度也快速下降, 这可能是由于血浆药物浓度下降加速了药物从组织向血浆中的转运。

吉西他滨和顺铂两组药物经颈内动脉及尾静脉注射后, 血浆及组织中的浓度变化有不同特点。吉西他滨注射后, 血浆及组织峰浓度均在注射结束后出现, 药物分配快。顺铂注射后, 静脉组靶组织内药物峰浓度出现于注射后28 min, 而动脉组出现于注射完毕时。可见, 顺铂静脉注射后存在较缓慢的组织吸收过程, 这可能与顺铂的蛋白结合率高及结合力强有关。动脉注射后, 顺铂首先经过靶组织, 大量游离顺铂快速分布到靶组织中, 而静脉注射后顺铂首先进入全身循环与血浆蛋白结合, 减缓了顺铂在组织的分布速度, 并减少其在组织中分布浓度。组织内AUC定义为药物在组织内浓度和时间的乘积, 是组织与药物接触程度的量化指标。药物在组织内的AUC值与峰浓度可作为药物对靶组织作用强度的指标, 或作为对全身作用强度的指标, 也可通过比较靶组织与血浆中药物的AUC比值及峰浓度反映动静脉用药的优劣。