实验动物血样采集

实验动物血样采集（共3篇）

实验动物血样采集 篇1

基层从事动物疫病防控工作，血样采集实际操作中需要注意的问题总结、归纳，主要注意的事项如下：

一、选择好最佳采血时间

要选择好采血时间与免疫日期的间隔。鸡新城疫、禽流感、猪瘟、牛羊口蹄疫在免疫21天后采血，猪口蹄疫、高致性猪蓝病在免疫后28天采血。因为疫苗接种后，动物体内产生稳定抗体水平，需要一定的时间和过程。

二、做好血样采集前的准备工作

采样前，准备好采样所需的物品和防护用品，如酒精棉、一次性注射器、记号笔、自封袋、标签、胶皮手套、口罩、防护服、胶鞋、保温箱等。

三、采样前消毒，采样后止血

采血前用75%酒精棉球局部消毒，以避免畜禽因采血而发生局部感染；鸡的皮肤游离性比较大，采血后容易形成血肿，所以采血后，要搞好止血，把酒精棉球挤净，压迫采血部位，防止血流过多。

四、保证血清质量

获得符合卫生要求和高质量的血清是采血的关键。采血方法同静脉注射，只是静脉注射的方向是针头扎向近心端，而采血的方向则相反，针头扎向远心端，这样采血顺利。采血时应使血液沿采血管壁流入瓶中，不能让血液直冲瓶底或滴入瓶底，容易引起溶血。

采完的血不要将采血管立放，这样血清不易析出。要将采血管塞好后平放或斜放于容器中，血清就会自然析出，也可用离心机分离血清。血样采好后，在来回的拿取的过程中，要尽量避免振荡，防止溶血，影响监测结果。

五、保证采血样品量

在基层采血主要是作抗体效价的监测，一份血清可能做几种病的抗体效价监测，另外，有可能进行复查，所以血样一定要足。一般牛、猪、鸡血不少于3ml，血清量不少于1ml。

六、样品要有代表性

在同群中要随机抽样，不要挑着抽。更不要专挑那些不健康、消瘦。如果挑着采样，样品代表不了整体，监测的效果没有什么意义。抽样监测结果要代表群体，从抽样的抗体合格率率反应整体的合格率，只有随机才有代表性。

七、采样的标记要填写规范

采血完成后，务必把采血的容器用标记笔记上标号或粘贴编号，同时填写采样单，并一一对应。

采样单是对采样品种群基本情况的简要记录，一定要认真填写，包括畜主、饲养量、采样量、采样时间、免疫时间、疫苗种类、生产厂家、剂量都要一一填写完整。

八、样品的保存

血样采好后，标记、整理、归类，放入加有冰袋的保温箱或者保温瓶中24小时内带到实验室，及时做血清学分离。分离后24小时使用的冷藏保存，超过24小时的要冷冻保存。

实验动物血样采集 篇2

本人从事血样采集工作多年, 并在2008年全市重大动物疫病采样检测技术大比武中荣获“采样技术操作标兵”。现就血样采集技术与注意事项谈一些个人的体会。

1 禽的采血方法

1.1 成禽心脏采血

助手抓住两翅及两脚, 右侧保定, 采样人员在触及心搏动明显处或胸骨前端至背部下凹处连接线的1/2处进针, 针尖与皮肤垂直或稍向前内方刺入大约2~3cm, 回抽见回血时, 即可把针心向外拉, 使血液流入采血针, 采血2~3m L/只, 采血完毕用酒精棉球按压并拔出针头, 血样贴上标签。

1.2 成禽翅静脉采血

助手一手握住禽的两腿, 另一手握住两翅。采样人员在翅静脉处消毒, 手持采血针, 从无血管处向静脉刺入, 见有血液回流即把针心向外抽, 使血液流入采血针, 采血2~3m L/只, 采血完毕用酒精棉球按压并拔出针头, 血样贴上标签。

1.3 注意事项

(1) 采血前, 一定要将禽保定好, 以防扎针时骚动不安或采血中途针头脱出, 造成心内出血, 引起禽的死亡或静脉出血肿胀。 (2) 严格遵守无菌操作规程, 使用一次性采血针管。采血局部应严格消毒, 以防感染。

2 牛羊采血方法

2.1 牛羊颈静脉采血

将牛、羊保定好, 采血部位在颈上1/3与颈中1/3交界处的颈静脉沟内, 采血部位剪毛、消毒。采血时, 先用左手拇指在颈静脉沟的下端紧压静脉血管, 使其充盈、怒张。右手持一次性采血器针头, 沿静脉管方向与皮肤呈45°角快速刺入血管内, 如见回血采。取5m L血, 采血完毕用酒精棉球按压并拔出针头, 血样贴上标签。

2.2 牛尾静脉采血

在牛尾根后下方4~5cm的正中, 用一次性采血器针头垂直刺入2~3cm见有回血采取5m L, 采血完毕用酒精棉球按压并拔出针头, 血样贴上标签。

2.3 奶牛乳房静脉采血

奶牛腹部可见明显隆起的乳房静脉, 消毒后在静脉隆起处, 一次性采血器针头向后腿方向快速刺入, 见有血液回流采取5m L, 采血完毕用酒精棉球按压并拔出针头, 血样贴上标签。

2.4 采血注意事项

牛的皮肤较厚, 进针时宜将针头与皮肤垂直快速刺入;若缓慢进针, 难于刺皮肤且血管易于滑动, 往往不能一针见血。

3 猪的采血方法

3.1 耳静脉采血

站立或横卧保定, 助手用力压在耳根静脉的近心端, 采样人员用手指轻弹或用酒精棉球反复涂擦耳静脉, 使血管充分臌胀起来。右手持一次性采血器针头沿静脉管方向, 使针头与皮肤呈30~45°刺入血管内, 轻轻抽动针芯, 如有回血采取3~4m L, 采血完毕用酒精棉球按压并拔出针头, 血样贴上标签。

3.2 猪前腔静脉采血

此法虽然难度较大, 但是如果技术熟练的话, 采血顺畅、省时, 采血量多, 所以是猪采血常用的方法。

(1) 成年公、母猪的采血:采用站立式保定方法, 让饲养员用保定绳在公、母猪跟前将其上颌骨吊起, 向前方用力, 以猪前肢刚刚着地不能踏地为准, 并充分暴露两侧胸前浅窝为度。要求尽可能吊得高一点使猪的头颈与水平面呈30°以上。这样既方便采血人员察看部位, 又使前腔静脉向外突出, 静脉血充胀。保定完成后用70%酒精棉球消毒部位, 左或右胸前浅窝都可, 但一般是右胸前浅窝进针较好, 采血人员手持一次性采血注射器朝右侧胸前浅窝最低且垂直凹底部方向进针并向外抽针芯, 直至前腔静脉血呈直线状射入采血注射器, 一般5m L即可。采血完毕用酒精棉球按压并拔出针头, 解除保定, 血液样品贴上标签。

(2) 仔猪和小猪的采血:一般30kg以内的猪, 采取仰卧保定的方式。一助手抓住两后肢, 尽量向后牵引, 另一助手用手将下颌骨下压, 使头部贴地, 并使两前肢与体中线基本垂直。此时, 两侧第一对肋骨与胸骨结合处的前侧呈两个明显的凹陷窝。在右侧凹陷窝处, 消毒皮肤后, 采血人员右手持一次性注射器, 由上而下稍偏向中央及胸腔方向刺入, 见有回血, 即可采血, 一般3~4m L, 采血完毕, 左手拿酒精棉球按压并拔出针头, 血样贴上标签。

(3) 中、大猪的采血:中、大猪采用站立式保定, 采血时让猪站立, 助手面对猪的头部, 用金属保定器套住猪的上颌骨, 收紧金属保定器, 向前方用力牵引, 并将猪的上颌骨稍稍吊起, 使猪两前肢刚刚着地, 这时猪多呈后退姿势, 从而保持安定的站立的状态。此时猪的前腔静脉最佳采血点, 即胸前两侧的凹陷窝也充分暴露, 在右侧凹陷窝处, 消毒皮肤后, 采血人员右手持一次性注射器, 朝凹陷窝最低处, 由下而上且垂直凹部方向刺入, 采血人员觉得有负压感且见有回血, 轻轻抽动注射器内芯即可采血, 一般5m L, 采血完毕, 左手拿酒精棉球按压并拔出针头, 解除保定, 血样贴上标签。

(4) 注意事项: (1) 选用合适的采血器针头。由于猪的大小不同, 前腔静脉的深浅不一样, 要求使用的针头也是不一样的。若针头太短刺不到前腔静脉:针头太长, 可能刺穿整条前腔静脉, 也是采不到血的。根据猪的大小使用不同的针头型号:成年公猪、母猪选用16×50mm针头;中、大猪选用12×38mm针头;10kg以下乳猪选用9×20mm针头;10~30kg小猪选用9×25mm针头。 (2) 做好保定, 注意安全。按照猪的大小采取不同保定方式。保定后要使猪相对稳定, 不能左右晃动或后缩。胸前窝凹一定要充分暴露, 才能顺利进行前腔静脉采血。抓猪、保定时动作不要粗暴。要尽量用抚摸动作, 使其安静。特别在套保定绳的金属圈环时要避免人被咬伤或猪口腔受伤。 (3) 选准确进针的部位。猪的前腔静脉越往头部越浅, 但也越细;越靠胸部越粗, 但也越深, 所以采血应选择适当的部位。若小猪采血的部位太靠头部, 血管太细, 很难扎中, 就是扎中也很难出血, 所以小猪的采血部位应稍靠后。中、大猪和成年公猪、母猪血管比较粗, 靠胸部较深, 针头够不到血管, 所以应稍靠前。根据本人的经验, 30kg以下的小猪应采两前肢与气管交汇处;成年公、母猪和30kg以上的中、大猪可选颈部最低凹处。进针时要掌握好一定的方向、角度和深度, 要随时调整。若血管被刺穿会引起血肿, 要立即停止采血, 须换另一头猪采血。特别要注意的是对仔猪采血时, 不能太猛、太深, 以免伤及心包或心脏。 (4) 处理好所采的血液样本。所采样本立即放到保温箱内, 防止血液变质, 并尽快送检, 以确保检测结果的准确性。

实验动物血样采集 篇3

关键词：血细胞分析仪,血样放置时间,WBC,RBC,PLT

在临床血常规分析中, 血细胞分析仪具有检测快速、结果重复性好等优点, 在提高了检验人员工作效率的同时为临床疾病诊断、治疗提供了更多有价值的实验数据, 从而得到广泛应用[1]。有资料报道, 在室温下EDTA-K2抗凝静脉血白细胞 (WBC) 、红细胞 (RBC) 、血小板 (PLT) 计数可稳定24 h[2].为了解在本实验室实验条件下, 随着血样采集后的时间延长WBC、RBC、PLT计数的变化, 我们对30份我单位健康体检人群血样不同放置时间后进行WBC、RBC、PLT计数, 现报告如下。

1 材料与方法

1.1 被检血样

来自我单位健康体检人群, 受检对象清晨空腹抽取2 m L肘静脉血于EDTA-K2抗凝真空采血试管中, 轻轻颠倒混匀。室温下 (19～23℃) 严格按照仪器说明书操作完成检测。

1.2 检测试剂

血细胞分析仪用稀释液、血细胞分析仪用溶血剂、M-30PR冲洗液均由深圳迈瑞生物医疗电子股份有限公司生产。

1.3 检测仪器迈瑞BC-2600血细胞分析仪。

1.4 统计学方法

同一血样连续检测3次后, 将RBC、WBC、PLT计数汇总分析, 计算重复值之间的平均值 (Mean) 、标准差 (SD) 和变异系数 (EV) [3]。同一样本不同放置时间检测的数据差异<20%为可接受范围[4]。对不同时间点的数据进行相关性分析。

2 结果

2.1 血样采集后不同放置时间的RBC、WBC、PLT计数分析

血血样采集后不同放置时间的RBC、WBC、PLT计数结果见表1, 统计计学分析结果见表2, 检测数据差异 (EV) 均<20%, 为可接受范围。

2.2 血样采集后放置48 h的RBC、WBC、PLT计数相关性分分析

血样采集后检测结果的相关性分析见图1～3.结果显示:血血样采集后放置48 h检测结果间具有很好的相关性, 相关系数数 (r) 均>0.95.

3 讨论

分析30份我单位健康体检人群血样, 样本采集后放置<1 h, 24 h, 48 h, 用迈瑞BC-2600血细胞分析仪检测RBC、WBC、PLT计数, 结果经统计学分析, 检测数据差异均<20%, 为可接受范围。上述结果标明, 血样采集后, 若不能及时送检, 控制温度在19～23℃, 存放或运送时间延长至48 h对检测结果影响不大。需要说明的是, 上述研究是在同一实验室, 由同一操作者并在较严格的温度控制条件下完成。进一步扩大样本量, 比较不同实验室以及不同操作者情况下检测结果的可靠性是广泛推广应用之前所必需的。

参考文献

[1]周芝, 陈春兰, 冯文安, 等.血细胞分析仪中MCV、RDW对PLT计数的影响的调查研究[J].中国卫生检验杂志, 2011, 7 (21) :1735-1736.

[2]杨萍, 廖琳虹, 林伟.做好血细胞分析仪质量控制的体会[J].实用医技杂志, 2006, 13 (20) :3656-3657.

[3]寿爽, 王晓君, 何佳慧, 等.Sys mex XE-2100全自动血细胞分析仪测定白细胞分类应用[J].中国卫生检验杂志, 2011, 8 (21) :1983-1984.